實驗動物染毒途徑和技術3
經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：①硫化鈉8e溶于l00ml水中；①硫化鈉3份、洗衣粉l份、淀粉7份加水調成糊狀，用脫毛劑前，先剪去脫毛部位的樁毛，注意不可用水浸被毛，以防止脫毛劑順被毛到達毛根深郎損傷皮膚．用鑷子夾棉球或紗布團蘸脫毛荊徐抹在已剪去被毛的部位，3~5min后用溫水洗去脫下的毛和脫毛劑． 脫毛的要求是不應損傷脫毛區的表皮，脫毛區面積不大于動物體裹面積的l0％。于脫毛后Z4h涂抹一定量受試物，蓋上2～4層紗布和一層玻璃紙或塑料薄膜．再用無刺激性的膠布固定，接觸規定的時間。如要求重復接觸受試化學物，一般間隔l周再剪剃毛1次。 ......閱讀全文
實驗動物染毒途徑和技術3
經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：①硫
實驗動物染毒途徑和技術1
在毒理學試驗中染毒途徑的選擇，應盡可能模擬人在接觸該受試物的方式。最常用的染毒途徑為經口、經呼吸道；經皮及注射途徑。染毒的途徑和方法根據實驗目的、實驗動物種類和藥物劑型等情況確定。不同途徑的吸收速率，一般是靜脈注射>吸入>肌內注射>腹腔注射>皮下注射>經口>皮內注射>其他途徑(如經皮等)
實驗動物染毒途徑和技術4
（三)經皮膚染毒> 經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：
實驗動物染毒途徑和技術2
? 實驗動物 呼吸量 最低呼吸量 靜式染毒2h可放動物數
關于急性毒性試驗的實驗動物和染毒方法
(一) 實驗動物選擇 在衛生毒理學領域中，體內試驗以實驗動物為研究對象，最終是為了闡明受試 外來化合物對人的急性危害性質和危害強度。所以選擇實驗動物時，要求在其接觸化合物之后的 毒性反應，應當與人接觸該化合物的毒性反應基本一致，雖然利用任何一種或幾種實驗動物的急性毒性結果向人外推都必須十分慎重
急性毒性試驗實驗動物染毒方法
1.經口(胃腸道)接觸目的是研究外來化合物能否經胃腸道吸收及求出經口接觸的致死劑量(LD50)等。由于外來化合物可以污染飲水及食物,因此,此種染毒方式在衛生毒理學中占有重要地位。2. 灌胃是將液態受試化合物或固態、氣態化合物溶于某種溶劑中,配制成一定濃度,裝入注射器等定量容器,經過導管注入胃內。在每
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
關于急性毒性試驗的實驗動物和染毒方法介紹
(一) 急性毒性試驗的實驗動物選擇 在衛生毒理學領域中，體內試驗以實驗動物為研究對象，最終是為了闡明受試外來化合物對人的急性危害性質和危害強度。所以選擇實驗動物時，要求在其接觸化合物之后的毒性反應，應當與人接觸該化合物的毒性反應基本一致，雖然利用任何一種或幾種實驗動物的急性毒性結果向人外推都必
動物實驗的接種途徑和方法
動物實驗的接種途徑和方法是檢驗技師考試的內容，醫學教育網搜集整理相關內容供大家參考。 動物實驗的接種途徑和方法包括： ①皮內接種：通常以背部皮膚為宜。 ②皮下接種：選用腹壁、背部或腹股溝等處。 ③肌肉接種：一般選用臀部和大腿部肌肉，若為禽類以胸部肌肉為宜。 ④靜脈接種：家兔以耳靜脈外緣為
實驗動物給藥途徑和方法
（六）淋巴囊注射蛙類常采用此法，因其皮下有數個淋巴囊，注入藥物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭背淋巴囊常作為蛙類給藥途徑。一般多選用腹部淋巴囊給藥。注射時將針頭從蛙大腿上端刺入，經大腿肌層入腹壁肌層，再進入腹壁皮下，即進入淋巴囊，然后注入藥液。有時也可采用胸淋巴囊給藥。方法是將針頭刺入口腔，使穿過下頜肌層入
實驗動物給藥途徑和方法
?在動物實驗中，為了觀察藥物對機能功能、代謝及形態引起的變化，常需將藥物注入動物體內。給藥的途徑和方法是多種多樣的，可根據實驗目的、實驗動物種類和藥物劑型等情況確定。 （一）皮下注射 注射時以左手拇指和食指提起皮膚，將連有5（1/2）號針頭的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、貓多在大腿外側，豚
急性毒性試驗的實驗動物染毒方法介紹
1、急性毒性試驗的實驗動物染毒方法— 經口(胃腸道)接觸目的是研究外來化合物能否經胃腸道吸收及求出經口接觸的致死劑量(LD50)等。由于外來化合物可以污染飲水及食物，因此，此種染毒方式在衛生毒理學中占有重要地位。 灌胃是將液態受試化合物或固態、氣態化合物溶于某種溶劑中，配制成一定濃度，裝入注
實驗動物接種途徑和接種方法試驗
實驗方法原理 實驗材料 實驗動物試劑、試劑盒 病毒試劑儀器、耗材 注射器實驗步驟 皮下接種。注射時輕輕捏起皮膚，手持注射器將針頭刺入，固定后即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在后大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外側注射。皮下接種多用于觀察
實驗動物接種途徑和接種方法試驗——靜脈接種
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒病毒試劑儀器、耗材注射器實驗步驟靜脈接種。可造成病毒全身性感染，可觀察病毒的致病性或機體對病毒的清除機制。(1) 小鼠、大鼠的靜脈注射：常采用尾靜脈注射。鼠尾靜脈共有 3 根，左右兩側和背側各 1根．兩側尾靜脈比較容易固定，常被采用。(2) 豚鼠的靜脈注射：一般采用前肢皮
常用實驗動物介紹3
?28.NOD/Lt：(1)遺傳背景：①起源：在對ICR/Jcl小鼠進行近交培育的第6代時， 從白內障易感亞系分離出非肥胖糖尿病品系(nod)和非肥胖正常品系(NON)。在近交第20代時，首先發現NOD雌鼠有胰島素依賴性糖尿病。1988年從JAX引到IMLAS。②毛色和毛色基因：白化，AA、BB、c
實驗動物接種途徑和接種方法試驗——顱內接種法
實驗方法原理實驗材料實驗動物試劑、試劑盒病毒試劑儀器、耗材注射器實驗步驟顱內接種法。將臨床標本或特定的病毒直接接種于動物腦內，使動物形成實驗性中樞神經系統感染。(1) 小白鼠：接種時用拇指與食指固定鼠頭，消毒注射部位，于眼后角、耳前線和顱中線構成的三角區域中間進行注射，進針 2-3 mm。注射量乳鼠
實驗動物的麻醉方法3
四、實驗動物用藥量的確定及計算方法（一）動物給藥量的確定觀察一種藥物對實驗動物的作用時，一個重要的問題就是給動物用多大的劑量較合適。劑量太小，作用不明顯，劑量太大，又可能引起動物中毒致死。可以按下述方法確定劑量：1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒劑量或致死劑量，然后用小于中毒量的劑量，或取致死量的若干
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。 一、實驗動物接種法 （一）小白鼠接種法 【
動物實驗技術2
2．于第①、②、③管內分別加乙型溶血性鏈球菌培養物、四聯球菌培養物、生理鹽水各0.5m1。 3．上述3支試管每管加入5%氯化鈣0.2ml，搖勻，置37℃水浴10min，待血液凝固，再繼續37℃水浴約30min，觀察結果。 【結果】 l．觀察時，可將小試管慢慢傾斜至30°
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。一、實驗動物接種法（一）小白鼠接種法【材料】1．小白鼠。2．無菌注射器(1ml
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗基本技術4
三、實驗動物的準備本文主要敘述制備轉基因鼠的實驗程序。(一)不育雄性公鼠:結扎公鼠與母鼠交配以后產生假孕母鼠。受結扎的公鼠需8周以上，對種系無特殊要求。在正式實驗前，結扎公鼠需與性成熟的雌性小鼠交配，反復交配兩次或三次，經檢查雌體有陰道栓，但均不懷孕產仔，則證明結扎成功。結扎公鼠使母鼠產生陰道栓的能
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。 一、常用的麻醉藥 (一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。一、常用的麻醉藥(一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％～1％；利多卡因，此藥見效快，組
實驗動物接種途徑和接種方法——皮下接種法及腹腔接種法
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒病毒試劑儀器、耗材注射器實驗步驟皮下接種。注射時輕輕捏起皮膚，手持注射器將針頭刺入，固定后即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在后大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外側注射。皮下接種多用于觀察動物病毒感染后的免疫學
動物細胞大規模培養技術3
?五、動物細胞無血清培養技術?動物細胞無血清培養是生物科學領域中的重要研究課題之一。由于無血清培養基可以是完全采用已知分子結構和構型組分的低蛋白或無蛋白培養基。因而它不僅為研究和闡明細胞生長、增殖和分化的調節機制提供了有力的工具，而且為現代生物技術，尤其是細胞工程的應用準備了更好的條件。下面就動物細