讓基因組測序繞過PCR擴增
在基因組測序中，PCR擴增似乎是繞不過去的一步。然而，PCR也帶來一些問題，包括不均勻擴增，導致某些序列的比例過高。對目前的新一代測序（NGS）平臺而言，測序某些堿基組成上存在嚴重偏向的基因組區域仍是一大挑戰。在GEN雜志上，Patricia Fitzpatrick Dimond博士介紹了PCR-Free的基因組測序。 文庫制備的變革 2009年，Sanger研究院的Iwanka Kozarewa博士及其同事介紹了一種無需擴增的Illumina文庫制備方法（Nature Methods 2009；6:291–295）。他們表示，GC偏向的基因組的定位和組裝有所改善。這種方法采用簇擴增步驟來富集完全連接的模板鏈，降低了重復序列的發生率，改善了序列定位和SNP檢出。 這種方法的核心是采用no-PCR接頭，它們包含額外的序列，讓模板能夠與流動槽表面直接雜交，這樣就不再需要PCR步驟。作者表示，通過此方法產生的DNA模板量低于......閱讀全文
PCR擴增儀的選擇
1971年Kleppe等人在Journal of molecular biology上發表文章首次準確、精煉、客觀的闡述了PCR方法，1976年一種從嗜熱水生菌(Thermus aquaticus)分離得到的熱穩定的DNA依賴的DNA聚合酶的應用大大增加了PCR的效率。而現今所發展出來的PCR則是源
pcr為什么要擴增
PCR擴增～獲得大量的目的片段～只有這樣才便于目的片段的分離和純化～要知道現在的分離純化手段DNA損失50%都算少的～
PCR擴增儀的選擇
1971年Kleppe等人在Journal of molecular biology上發表文章首次準確、精煉、客觀的闡述了PCR方法，1976年一種從嗜熱水生菌(Thermus aquaticus)分離得到的熱穩定的DNA依賴的DNA聚合酶的應用大大增加了PCR的效率。而現今所發展出來的PC
PCR擴增的反應條件
PCR擴增的反應條件：10×擴增緩沖液 10ul；4種dNTP混合物 各200umol/L；引物 各10～100pmol；模板DNA 0.1～2ug；Taq DNA聚合酶 2.5u；Mg2+ 1.5mmol/L；加雙或三蒸水至 100ul。PCR是一種體外DNA 擴增技術，是在模板DNA、引物和4種
PCR擴增儀工作原理
PCR技術的原理類似于DNA的天然復制過程，其特異性依賴于靶序列兩端互補的寡核苷酸引物，由變性-退火-延伸三個基本反應步驟構成 [2] 。 1. 模板DNA的變性 模板DNA經加熱至93℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下
PCR基因擴增儀簡介
聚合酶鏈式反應簡稱PCR（英文全稱：Polymerase Chain Reaction）聚合酶鏈式反應 聚合酶鏈式反應，簡稱PCR。聚合酶鏈式反應，其英文Polymerase Chain Reaction(PCR)是體外酶促合成特異DNA片段的一種方法,由高溫變性、低溫退火及適溫延伸等幾步反應
PCR擴增的反應條件
PCR擴增的反應條件：10×擴增緩沖液 10ul；4種dNTP混合物 各200umol/L；引物 各10～100pmol；模板DNA 0.1～2ug；Taq DNA聚合酶 2.5u；Mg2+ 1.5mmol/L；加雙或三蒸水至 100ul。PCR是一種體外DNA 擴增技術，是在模板DNA、引物和4種
分析PCR擴增的標準
?什么是PCR實驗的靈敏度?靈敏度指的是PCR擴增反應能夠檢測到目的基因的zui小值。研究結果表明，影 響PCR擴增效率的因素，如模板的復雜程度與完整性、引物的純度及其與模板的結合效率、反應溫度、DNA聚合酶的熱穩定性與擴增性能、反應緩沖液的離子組 成（主要指陽離子）、反應優化劑等等，都決定了PCR
核酸擴增—實時熒光PCR
實時熒光PCR，即在常規PCR擴增時加入一對引物的同時加入一個特異性的熒光探針，該探針為一寡核苷酸，兩端分別標記一個報告熒光基團和一個淬滅熒光基團。探針完整時，報告基團發射的熒光信號被淬滅基團吸收；剛開始時，探針結合在DNA任意一條單鏈上；PCR擴增時，Taq酶的5'-3'端外切
pcr為什么要擴增
PCR擴增～獲得大量的目的片段～只有這樣才便于目的片段的分離和純化～要知道現在的分離純化手段DNA損失50%都算少的～
PCR擴增制備目的基因
1．目的學會PCR操作的基本技術。2．原理是將待擴增的DNA模板加熱變性，與其兩側互補的寡聚核苷酸引物復性，然后經過耐熱的DNA聚合酶延伸。再進入下一輪變性—復性—延伸的循環，n次循環后DNA可被擴增（1+X）n倍。其中
目的基因的PCR擴增
實驗概要進行目的基因的PCR擴增實驗原理PCR（聚合酶鏈式反應）是一種選擇性體外擴增DNA或RNA的方法。它包括3個基本步驟：⑴變性：目的雙鏈DNA片段在94℃下解鏈；⑵退火：兩種寡核苷酸引物在適當溫度（50℃左右）下與模板上的目的序列通過氫鍵配對；⑶延伸：在Taq ? DNA聚合酶合成DNA的最適
PCR擴增儀－歷史發展
PCR這項技術是由凱利·穆利斯(Kary Mullis)發明，并因此在七年之后，1993年10月，獲得了諾貝爾化學獎該項殊榮。穆利斯的想法是，利用一種人工方法，和反復相同程序的方法，并利用一種特殊的酶——即DNA聚合酶來擴增特定的DNA片段。DNA聚合酶天然存在于生物體內，在細胞分裂前進行DNA的復
PCR擴增儀的步驟
一般的PCR反應由20到35個循環組成，每個循環包括以下3個步驟：利用高溫(93-98℃)使雙鏈DNA分離(熔解)。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷。在第一個循環之前，通常加熱長一些時間以確保模板和引物完全分離，僅以單鏈形式存在。該步驟時間1-2分鐘。在DNA雙鏈分離后，降低溫度使得引物可以結合于單
PCR擴增儀的選擇
1971年Kleppe等人在Journal of molecular biology上發表文章首次準確、精煉、客觀的闡述了PCR方法，1976年一種從嗜熱水生菌(Thermus aquaticus)分離得到的熱穩定的DNA依賴的DNA聚合酶的應用大大增加了PCR的效率。而現今所發展出來的PCR則是源
PCR擴增儀發展歷史
1971年，Dr. Kjell Kleppe首次在Journal of molecular biology期刊發表的文章中準確、客觀地闡述了PCR方法。 1985年，美國PE-Cetus公司的Kary Mullis等人發明PCR技術。它推動了現代醫學由細胞水平向分子水平、基因水平發展，是DNA
淺談PCR基因擴增儀
?聚合酶鏈式反應，簡稱PCR。聚合酶鏈式反應，其英文Polymerase Chain Reaction(PCR)是體外酶促合成特異DNA片段的一種方法，由高溫變性、低溫退火及適溫延伸等幾步反應組成一個周期，循環進行，使目的DNA得以迅速擴增，具有特異性強、靈敏度高、操作簡便、省時等特點。生命科學儀器
pcr擴增沒有條帶
你降低引物濃度，增加模版濃度，做一個梯度PCR試試
2012最受歡迎的測序文章，點滴決定成敗
作為測序生力軍的第三代測序技術能夠大大增加測序的效率和通量，不過很顯然第二代測序技術仍會繼續被廣泛采用。近日BioTechniques雜志評出了今年最受歡迎的兩篇測序文章以饗讀者，而這兩篇文章正是目前技術過渡時期的寫照。 近年來，基因組學、轉錄組學和宏基因組學等領域迎來了爆炸式的增長，這都
用于基因組測序及足跡分析的連接介導PCR實驗
實驗方法原理 實驗材料 0.4μg μL溶于pH 7.5的TE緩沖液的經打斷的基因組DNA試劑、試劑盒 第一鏈合成混合物 含有寡核苷酸引物I20μmol L單側接頭混合物連接酶稀釋液連接酶混合物2000 ?3000 Weiss 單位 mL T4 噬菌體 DNA 連接酶用于沉淀的鹽混合物10
用于基因組測序及足跡分析的連接介導PCR實驗
PCR可用以指數擴增位于兩個特定引物雜交位點之間的DNA片段，而在連接介導 的單側PCR中，本質上，它只需要一個引物雜交位點的特異性，第二個引物是通過連 接反應加上的單一接頭。這個接頭和旁側的基因特異性引物一起可以對任 何DNA片段進行指數級的擴增。由于一個確定的已知長度的序.列被加于每個片段，可以
用于基因組測序及足跡分析的連接介導PCR實驗
連接介導的單側PCR 從單層細胞制備用于DMS足跡分析的基因組DNA 從懸浮細胞中制備用于DMS足跡分析的基因組DNA ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理
DNA測序儀pcr測序反應
pcr測序反應 (1) 取0.2ml的pcr管，用記號筆編號，將管插在顆粒冰中，按下表加試劑： 所加試劑 測定模板管 標準對照管 bigdye mix 1μl 1μl 待測的質粒dna 1μl － pgem-3zf (+) 雙鏈dna － 1μl 待測dna的正向引物 1μl －
PCR技術（十六）：PCR產物測序
PCR技術代替了為測序而反復進行的分子克隆和模板制備步驟。PCR技術與自動測 序技術相結合后，它將成為一種最快、最有效的測定核苷權序列的方法。本章主要綜 述各種測模板的制備以及如何完成PCR產物的直接測序。與傳統的將PCR片段克隆入質 粒或病毒基因組相比，直接序列分析有兩個主要的優點:1)由于它是一
基因組測序
如果樓主指的是人類基因組計劃，那時用的方法叫做雙脫氧終止法，也叫做sanger法。它的原理是在DNA合成過程中，DNA聚合酶能夠使用ddNTP(雙脫氧核苷酸）來作為原料，但它的反應會在加入ddNTP的時候終止。具體實驗是通過PCR來完成的，但與普通PCR不同，它只需要一個引物而不是一對。在4個相同的
基因擴增PCR的擴增結果假陽性的原因
出現的PCR擴增條帶與目的靶序列條帶一致,有時其條帶更整齊,亮度更高。?引物設計不合適:選擇的擴增序列與非目的擴增序列有同源性,因而在進行PCR擴增時,擴增出的PCR產物為非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出現假陽性。需重新設計引物。?靶序列或擴增產物的交叉污染:這種污染有兩種原因:一是整個
PCR擴增模板和抗體可變區基因的擴增
PCR?擴增模板和抗體可變區基因的擴增???? 如果構建Fab抗體庫,必需利用RT-PCR獲取抗體基因;構建ScFv抗體庫,既可以DNA作模板,也可以cDNA作模板。本室在構建小鼠ScFv抗體庫過程中,主要采用DNA作為擴增模板。?【材料和試劑】（1）PCR儀（2）Taq酶（3）氯仿（4）瓊脂糖?【
PCR擴增效率的評估擴增曲線的解讀
做過PCR的小伙伴都知道，PCR前期的驗證引物探針性能和確定最適反應條件是確保正式實驗順利進行的前提。PCR實驗中有個相當重要的工作——即是PCR擴增效率的評估。擴增效率是PCR檢測性能最重要的指標之一，也是定量分析計算結果時所需要的參數。接下來，讓小編給大家細細說來吧。?什么是擴增效率?PCR是一
單細胞的可靠全基因組擴增
目前多種新型分析技術，如新一代測序和芯片，都是為細胞群體而設計的，需要一定的樣本量。對于一些臨床或法醫樣本，如腫瘤細胞或循環胎兒細胞等，它們的細胞數量有限，直接限制了其下游應用。例如，在分析腫瘤細胞中的體細胞DNA突變或單個細菌基因組時，單細胞中的DNA無法滿足測序的mg級樣品量需求。為了從少量樣品
DNA測序技術的現狀和發展（四）
1.1.3.2 模板制備程序完全的體外大規模模板制備工作是達成高通量、低價格測序技術的前提。已廣泛使用的乳液PCR擴增技術就是一種很好的方法。不過，由于很難在熱循環測序反應中保證乳液微滴的穩定性，因此最開始實驗的模板擴增方法是恒溫擴增法（isothermal）。乳液PCR不需要借助細菌的幫助就能擴增