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  • 發布時間:2019-09-12 15:47 原文鏈接: PCR擴增產物的克隆

    • 平端連接法

    • TA克隆法

               

    實驗方法原理

    平頭連接是將制備好的平頭載體和補平或削平的PCR產物直接進行連接。載體可用EcoR V或Sma I切成平頭;PCR產物純化后,可以在22℃用DNA聚合酶I作用30min(利用該酶所具有的3'→5'外切酶活性和5'→3'的聚合酶活性)。

    如果要求不高,PCR產物也可不加處理。如果使用Stratagene公司的pfu DNA聚合酶或New England Biolabs公司的Vent DNA聚合酶,這兩種酶有5'→3'校對能力,擴增出來的PCR產物已經是平頭,可以不作平端處理。平端連接的一個顯而易見的缺陷是連接效率低下,即使使用很高單位的連接酶,或在反應體系中加入PEG 8000,也只能很有限地提高效率。

    通常情況下,PCR產物可直接與平端載體DNA進行連接,但其連接效率效低。因為Taq DNA聚合酶具有非模板依賴性末端轉移酶活性,能在兩6條 DNA鏈的3'末端加上一個多余的堿基,使合成的PCR產物成為3'突出一個堿基的DNA分子。

    這種DNA分子的連接效率很低。由于PCR產物的效率通過較高,在采用大量T4 DNA連接酶并配以5-10u T4 RNA連接酶時,可顯著提高其連接效率。

    對于較短PCR產物,用PUS19的HincⅡ位點進行克隆,以X-gal和IPTG篩選,常可得到足量重組子。另一種提高克隆效率的途徑是先用Klenow大片段或T4DNA聚合酶消去3'末端突出堿基將PCR產物變成平端DNA,然后再用平端連接法克隆PCR產物。

     
    實驗材料

    模板DNA

    試劑、試劑盒

    SauI Klenow片段 T4連接酶

    儀器、耗材

    移液器 移液器吸頭 PCR小管 DNA擴增儀 電泳槽 電泳儀 臺式高速離心機

    實驗步驟

    一、PCR反應

     

    1.  依次混勻下列試劑

     

    (1)H2O:35 ul

     

    (2)10&times;PCR反應緩沖液:5 ul

     

    (3)25 mmol/L MgCl2:4 ul

     

    (4) 4種dNTP:4 ul

     

    (5)上游引物(引物1):0.5 ul
     

    (6)下游引物(引物2):0.5ul

    (7)模板DNA(約1 ng):0.5 ul

     

    (8)混勻后離心5秒。

     

    2.  將混合物在94℃下加熱5分鐘后冰冷,迅速離心數秒, 使管壁上液滴沉至管底,加入Taq DNA聚合酶(0.5  ul 約2.5 U),混勻后稍離心,加入一滴礦物油覆蓋于反應混合物上。

     

    3.  用94℃變性1分鐘,45℃退火1分鐘, 72℃延伸2分鐘, 循環35輪,進行PCR。最后一輪循環結束后, 于72℃下保溫10分鐘,使反應產物擴增充分。

     

    二、電泳

     

    取10  ul 擴增產物用1%瓊脂糖凝膠進行電泳分析,檢查反應產物及長度。

     

    三、PCR產物的純化

     

    擴增的PCR產物如利用T-Vector進行克隆,可直接使用,如用平未端或粘性未端連接,往往需要將產物純化。

     

    1.  酚/氯仿法

     

    (1)取反應產物加100  ul TE。

     

    (2)加等體積氯仿混勻后用微型離心機10000 rpm離心15秒,用移液器將上層水相吸至新的小管中。這樣抽提一次, 可除去覆蓋在表面的礦物油。

     

    (3)再用酚:氯仿:異戊醇抽提二次,每次回收上層水相。

     

    (4)在水相中加300  ul 95%乙醇,置-20℃下30 min沉淀。

     

    (5)在小離心機上10000 rpm離心10 min,吸凈上清液。加入1 ml 70%乙醇,稍離后,吸凈上清液.重復洗滌沉淀2次。將沉淀溶于7 ml ddH2O 中,待用。


    2.  Wizard PCR DNA純化系統

     

    Wizard PCR DNA純化系統可以快速、有效、可靠地提取PCR擴增液中的DNA,提純后的DNA可用于測序、標記、克隆等。 該系統中含有的試劑和柱子可供50次PCR產物的純化,試劑包括:50 ml Wizard PCR DNA純化樹脂、5 ml 直接提取緩沖液、50支 Wizard微型柱。

     

    (1)吸取PCR反應液水相放于1.5 ml eppendorf管中。

     

    (2)加100 ml直接提取緩沖液,渦旋混勻。

     

    (3)加1 ml PCR DNA純化樹脂,1分鐘內渦旋混合3次。

     

    (4)取一次性注射器, 取出注塞,并使注射筒與Wizard微型柱連接,用移液槍將上述混合液加入注射筒中,并用注塞輕推,使混合物進入微型柱。

     

    (5)將注射器與微型柱分開,取出注塞, 再將注射筒與微型柱相連,加入2 ml 80%異丙醇,對微型柱進行清洗。

     

    (6)取出微型柱置于eppendorf管中,12 000 g離心20秒,以除去微型柱中的洗液。

     

    (7)將微型柱放在一個新eppendorf管中,加50  ul TE或水,靜止1分鐘后,12 000 g離心20秒。

     

    (8)丟棄微型柱,eppendorf管中的溶液即為純化DNA,存放于4℃或-20℃。

     

    四、載體加dT尾

     

    1.  將1 ug pUC19用SmaⅠ全酶切。

     

    2.  在小管中按上述PCR反應,加入各種混合物,除將4 ul 4種dNTP改為4 ul 25 mM dTTP。

     

    3.  加入1 ul(5U)的Taq DNA聚合酶在72℃下加熱2 h。

     

    4.  按前面三中所述,用酚:氯仿:異戊醇抽提二次。

     

    5.  加入2倍體積 95%乙醇,在-20℃下沉淀1 h。

     

    6、離心,用70%乙醇漂洗后,真空抽干,溶于10ml ddH2O中。

     

    五、PCR產物與載體粘末端連接

     

    1.  在7 ml PCR產物中加1 ml帶dT尾的pUC質粒。

     

    2.  加1 ml T4DNA連接酶,1 ml 10&times;連接緩中液,混勻,16℃連接過夜。

     

    3.  取5 ml連接產物轉化感受態細胞并篩選重組子。

     

    六、PCR產物3'突出端切平及平末端連接

     

    1.  在50 ml的PCR產物中,直接加0.5 ml T4 DNA聚合酶混勻。

     

    2.  37℃反應10分鐘后,70℃滅活10分鐘。

     

    3.  用酚:氯仿抽提2次。

     

    4.  乙醇沉淀。沉淀用70%乙醇漂洗后,真空抽干,溶于7 ml ddH2O中。

     

    5.  質粒用Smal 切開后,70℃ 15分鐘滅活酶,取1 ml (約0.1 mg)加入上述PCR產物中。加T4 DNA連接酶1 ml ,連接緩沖液1 ml 。

     

    6.  取5 ml 連接產物轉化感受態細胞并篩選重組子。

         

       

                展開           
    注意事項

    1.  PCR反應液可直接用于連接,但最好對PCR產物純化后進行連接,既能去掉dNTP與ATP競爭連接酶又能濃縮PCR產物。

    2.  PCR非常靈敏, 操作應盡可能在無菌操作臺中進行。

     

    3.  吸頭、離心管應高壓滅菌, 每次吸頭用畢應更換, 不要互相污染試劑。

     

    4.  加試劑前, 應短促離心10秒鐘, 然后再打開管蓋, 以防手套污染試劑及管壁上的試劑污染吸頭側面。

     

    5.  應設含除模板DNA所有其它成分的負對照。

     

    6.  純化樹脂在使用前必須充分混勻。

     

    7.  PCR產物中礦物油應盡量吸去,否則會影響提取DNA的 產量。

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    其他

    一、 PCR反應中的主要成份


    1.  引物
     

    PCR反應產物的特異性由一對上下游引物所決定。引物的好壞往往是PCR成敗的關鍵。引物設計和選擇目的DNA序列區域時可遵循下列原則:

    (1) 引物長度約為16-30 bp, 太短會降低退火溫度影響引物與模板配對,從而使非特異性增高。太長則比較浪費,且難以合成。


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