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  • 3、質粒膜板制備:參照第一章所述的方法。

    (二)超螺旋質粒DNA 的堿變性:

    1、取4mg(約2pmol)超螺旋質粒DNA 至一eppendorf管中,加無離子水到終體積18ml。

    2、加2ml 2mmol/L NaOH/2mmol/L EDTA 溶液,置于室溫(25℃下)保溫5分鐘。

    3、加2ml 2mol/L NaAc溶液(pH4.6)渦旋混勻,使之中和。

    4、加75ml無水乙醇,充分混勻后,置于干冰或-70℃沉淀10分鐘。

    5、于12000g離心10分鐘,棄去上清,用200ml預冷的70%乙醇洗沉淀后,干燥沉淀,溶于20ml無離子水中。

    (三)、測序反應:

    1、引物和模板的退火:

    (1)在一離心管中,混合如下幾種試劑:

    引物 約1-2pmol

    5×T7 DNA 聚合酶測序反應緩沖液 2ml

    DNA 約1mg

    加ddH2O終體積至10ml 。

    (2)將試管蓋蓋上后,65℃ 加熱2分鐘,然后在大約30分鐘左右的時間內,使試管的溫度緩慢地降到室溫。降溫的過程中可使用小的加熱板或小型的保溫儀,也可使用已調至65℃的水浴,使它們的溫度在室溫下緩慢地降至室溫即可。當溫度降至30℃以下時,退火結束。可將小試管置于冰上,退火完畢的模板須在4小時內使用。

    2、標記反應

    (1)在一個標準的反應過程中(從引物處開始,可讀到500個堿基以上),首先需要按1:5稀釋標記混合物。如4ml 混合物則加雙蒸無離子水16ml。該稀釋液儲存在 -20℃可使用數周。如果所要測定的序列小于30個堿基,可將標記緩沖液稀釋15倍,同時,模板DNA 要高于0.5pmol。由于DNA 模板量的不足,會降低標記反應的程度,即只標記引物后的幾個核苷酸。

    (2)用冰預冷的TE緩沖液按1:8稀釋T7 DNA 聚合酶。酶液稀釋后應立即使用,置于冰浴不宜超過60分鐘。不得使用標記混合物、DTT溶液或非緩沖液類溶液稀釋酶液。

    (3)在已退火的引物 -模板混合物中,依次加入:

    0.1mol/L DTT 1.0ml

    標記混合物 2.0ml

    [a-35P]dATP或[a-35S]dATP 0.5ml

    已稀釋好的T7 DNA 聚合酶 2.0ml

    混合充分(注意不得產生氣泡),置于室溫5-10分鐘。

    如果在電泳時碰到帶壓縮問題,則dITP 混合物的效果優于dGTP混合物,dITP混合物的使用方法與dGTP混合物的使用是相似的。

    [注意] 1、稀釋時應將所有的溶液預先混合完全后再加入酶液。

    2、在第(3)步的過程中,如果反應中有幾次冷卻,保溫的時間過長或溫度太高的話,則會使測序反應短于100個堿基。

    3、鏈終止反應:

    (1)取4支eppendorf管分別標上G,A,T,C。

    (2)每個管分別加入2.5ml G,A,T,C鏈末端終止混合物,立即蓋上蓋子以防液體蒸發(本反應最好在標記反應前做好)。dGTP和dITP混合物依據各自需要 選用。

    (3)將eppendorf管預熱至37℃ 1分鐘。

    (4)待標記反應完畢后,取3.5ml標記反應液至上述4支eppendorf管中,稍微離心一下,并將上述四管置于37℃保溫。注意在每一次反應中,均應使用新的吸液頭,以免交叉污染。

    (5)繼續保溫3-5分鐘(若使用dITP時,保溫時間可延長至30分鐘,對反應產物沒有任何影響。

    (6)在上述四管中各加入4ml終止緩沖液。混合均勻后,置于冰浴中。本樣品即可上樣電泳。用35S標記反應的樣品可置于-20℃保存一周,此時樣品只有極少量的降解。而32P標記的則需在當天電泳以免降解。

    (四)測序凝膠板的制備及電泳 參考第一節測序凝膠板的制備及電泳部分。樣品加熱至75-80℃ 2分鐘,立即上樣,每個泳道的使用量為2-3ml

    (五)測序凝膠板的干燥及放射自顯影。

    電泳完畢后,經32P或35S標記的產物可用對b-射線敏感的X-光膠片放射自顯影檢測。

    1、取下電泳的玻璃板,去除兩邊的壓條,用小的薄鋼片撬開玻璃板。若玻璃板用粘合硅烷處理過,凝膠會緊緊地粘合于玻璃板上,則凝膠與玻璃板一起進行下面步驟的處理。如果玻璃板沒有經過粘合硅烷的處理,則可用3MM大濾紙貼在有凝膠的玻璃板上,小心地揭下凝膠,準備下一步的處理。

    2、去除尿素,將含有凝膠的玻璃板或濾紙浸于含有2升10%冰醋酸的大號顯液盆中,輕輕振蕩15分鐘,去除尿素。

    3、干膠:含有凝膠的玻璃板可用電吹風吹干,而含有凝膠的濾紙則可用專用的干膠設備如真空加熱干膠儀抽干。

    4、已經干燥的凝膠即可進行放射自顯影。在玻璃板含有凝膠的這一面加上X-光片后,用另一塊相似大小的玻璃板夾住,然后用夾子固定,置于暗盒中曝光。而含有凝膠的濾紙則可置于X-光曝光盒中放射自顯影。一般32P曝光過夜即可,而35S為2-3天。

    5、曝光完畢后的X-光片即可沖洗,獲得序列信息。將X光片置于水中先濕潤,然后置于顯影液中顯影,直至條帶清晰顯示為止。X-光片用水淋洗片刻后置于定影液中定影15分鐘以上。取出X-光片干燥并讀出序列。


    [ 注意] 1、去除尿素是非常重要的,如果有殘存的尿素,則在干膠過程中會使凝膠很粘,而無法進行放射自顯影。可以用10%冰醋酸洗二次,第一次15分鐘,第二次 10分鐘。如果膠濃度高于12%,則有可能在干膠過程中會產生皺紋,防止的方法有二種:(1)冰醋酸溶液中加入1%-2%的甘油;(2)不干燥膠,直接在冰箱中以冰凍狀態曝光,應注意的是在使用這個方法時,要在凝膠和X-光片之間加一層薄的塑料薄膜。一般來說都使用第一種方法。

    2、凝膠一定要充分干燥方可進行曝光,否則X-光片會粘在膠的表面,致使以后的操作困難。

    3、曝光時間應根據所使用的同位素而定,如果同位素已過半衰期則應相應延長曝光的時間。


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